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                教你成為平淡無(wú)奇的WB實(shí)驗(yàn)小能手—樣本制備篇
                更新時(shí)間:2021-07-01   點(diǎn)擊次數(shù):1415次

                蛋白質(zhì)印跡(Western Blot, WB)又稱為免疫印跡(Immunoblot),是利用SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)將樣品中分子量大小不同的蛋白分開,然后通過電轉(zhuǎn)移的方法將凝膠中的蛋白定量地遷移并幾乎原位復(fù)制、固定到固相膜上,再利用抗原、抗體的特異性結(jié)合反應(yīng),特殊的抗體標(biāo)記技術(shù)以及相應(yīng)的檢測(cè)方法,進(jìn)而對(duì)目的蛋白進(jìn)行定性、相對(duì)定量檢測(cè)的技術(shù)。此項(xiàng)技術(shù)誕生于上世紀(jì)七十年代,近半個(gè)世紀(jì)以來(lái)經(jīng)久不衰。
                WB實(shí)驗(yàn)流程分為樣本采集,蛋白樣品制備,上樣,凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,封閉,一抗孵育,洗膜,二抗孵育,洗膜,顯色(信號(hào)檢測(cè))。作為一名實(shí)驗(yàn)汪是不是近又被折磨到體無(wú)完膚?今天來(lái)和大家聊聊應(yīng)用廣泛幾乎人人都曾中槍的Western Blot實(shí)驗(yàn)—樣本采集和蛋白制備的相關(guān)知識(shí)和技巧。


                一、樣本采集和保存
                1. 對(duì)于動(dòng)物組織和植物器官,樣本較多或取樣時(shí)間間隔太長(zhǎng)則需先將樣本放入液氮速凍冷存;若未能及時(shí)進(jìn)行蛋白樣品制備,可液氮速凍后,存入-80℃保存約六個(gè)月或浸入液氮罐保存約一年。
                2. 對(duì)于細(xì)胞和一些微生物樣本,可去除培養(yǎng)基后,加裂解液制備蛋白樣品;若未能及時(shí)制備蛋白樣品,去除培養(yǎng)基后,將其液氮速凍后保存于-80℃(約一個(gè)月)或保存于液氮(約三個(gè)月)。
                3. 所有樣本均不建議保存于-20℃。-20℃時(shí),組織、細(xì)胞內(nèi)的水會(huì)結(jié)晶,細(xì)胞活性和組織微觀結(jié)構(gòu)會(huì)受到傷害,生物大分子受到組織、細(xì)胞內(nèi)多種因素的影響,穩(wěn)定性可能會(huì)降低。

                二、蛋白提取
                一般為了提取到足夠的蛋白以及更容易地提取蛋白,需要準(zhǔn)備足夠量的樣本,要求樣本量為細(xì)胞>106個(gè),組織>30mg,菌體濕重>10mg,植物>100mg,血清>50µL。蛋白提取的原則:低溫快速,裂解充分。
                下面對(duì)一些常用樣本的蛋白提取過程進(jìn)行簡(jiǎn)單描述:
                1. 細(xì)胞樣本
                一般樣本為1×106~1×107個(gè)細(xì)胞,根據(jù)細(xì)胞量多少或不同細(xì)胞中蛋白含量的多少所加裂解液的量也不相同,一般1×106個(gè)細(xì)胞,加裂解緩沖液100~200µL,具體實(shí)驗(yàn)操作時(shí)參照以上比例,可進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。
                1) 懸浮細(xì)胞:收集培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中的細(xì)胞,4℃條件下1000~3000rpm,離心3~5min,留下細(xì)胞沉淀,去除細(xì)胞培養(yǎng)基,然后用預(yù)冷的0.01M PBS(即1×PBS)輕洗2次,4℃條件下1000~3000rpm,離心3~5min,去除上清,取用細(xì)胞沉淀,按照上述參考比例加入適量裂解緩沖液,吹打混勻,冰上裂解15~30min。
                2) 貼壁細(xì)胞:直接去除培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基,用預(yù)冷的1×PBS輕洗2次,去除PBS,加入適量裂解緩沖,用細(xì)胞刮刮下細(xì)胞,連同裂解緩沖液一起收集,吹打混勻,冰上裂解15~30min?;蛘哌€有一種方法是直接用細(xì)胞刮刮下細(xì)胞,連同培養(yǎng)基一起收集,后續(xù)過程同懸浮細(xì)胞;再有一種方法,是用胰酶消化細(xì)胞后,收集細(xì)胞,離心沉淀,用預(yù)冷的PBS輕洗細(xì)胞沉淀,后續(xù)過程同懸浮細(xì)胞,但胰(蛋白)酶消化的方法不適用于目的蛋白為細(xì)胞膜上的膜蛋白,會(huì)造成影響。
                2. 組織樣本
                一般動(dòng)物組織樣本,按照1mg組織加入10µL裂解液的比例進(jìn)行添加,不同的組織蛋白含量也不同,需要調(diào)整添加量。去除組織樣本上的脂肪(可用預(yù)冷的眼科剪、鑷子去除)、血液(用預(yù)冷的PBS清洗)等雜質(zhì),防止造成污染,產(chǎn)生干擾。然后對(duì)處理好的樣本,加入裂解緩沖液,用預(yù)冷的眼科剪在冰上將其剪碎,可以加入鋼珠后,高速振蕩研磨儀進(jìn)行破碎。對(duì)于骨、肌肉、皮膚、尾巴、韌帶組織等或硬度大或韌性強(qiáng)的樣本,可以先試著剪碎,再進(jìn)行液氮研磨后加入適量裂解液。組織樣本處理后,冰上放置15~30min。
                3. 冰上放置裂解的同時(shí),需要加入適量蛋白酶抑制劑來(lái)減少蛋白酶的水解作用,磷酸化蛋白的提取還需要加入蛋白磷酸酶抑制劑。
                4. 冰上放置裂解后,建議再進(jìn)行超聲處理,經(jīng)過超聲處理,裂解更充分。
                5. 如有特殊的樣本或者特殊的目的蛋白,常規(guī)方法難以提取,建議查閱相關(guān)文獻(xiàn),參照文獻(xiàn)上的配方和步驟提?。蝗艉笪凑业较嚓P(guān)資料,可購(gòu)買商品化的試劑盒。

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